实验室检测葡萄球菌需要的仪器设备
你好！
主要需要培养箱，温箱，无菌操作室等。L
一般的不需要，之前在医院实习直接是在实验台做的，实验室连安全柜都没有
1.恒温培养箱：36℃±1℃；2.冰箱：2℃——5℃；
3.恒温水浴箱：37℃——65℃；
4.天平：感量0.1克；
5.均质器；
6.振荡器；
7.无菌吸管：1毫升（具备0.01毫升刻度）、10毫升（具备0.1毫升刻度）或微量移液器及吸头；
8.无菌锥形瓶：容量100ml、500ml；
9.无菌培养皿：直径90mm;
10注射器：0.5ml；
11.PH计或PH比色管或精密PH试纸。
一，设备和材料：
1.恒温培养箱：36℃±1℃；
2.冰箱：2℃——5℃；
3.恒温水浴箱：37℃——65℃；
4.天平：感量0.1克；
5.均质器；
6.振荡器；
7.无菌吸管：1毫升（具备0.01毫升刻度）、10毫升（具备0.1毫升刻度）或微量移液器及吸头；
8.无菌锥形瓶：容量100ml、500ml；
9.无菌培养皿：直径90mm;
10注射器：0.5ml；
11.PH计或PH比色管或精密PH试纸。
RG
gQ
食品安全国家标准
食品微生物学检验 金黄色葡萄球菌检验
1 范围
本标准规定了食品中金黄色葡萄球菌（Staphylococcus aureus）的检验方法。
本标准第一法适用于食品中金黄色葡萄球菌的定性检验；第二法适用于金黄色葡萄球菌含量较高的食品中金黄色葡萄球菌的计数；第三法适用于金黄色葡萄球菌含量较低而杂菌含量较高的食品中金黄色 葡萄球菌的计数。
2 设备和材料
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：
2.1 恒温培养箱：36 ℃±1 ℃。
2.2 冰箱：2 ℃～5 ℃。
2.3 恒温水浴箱：37 ℃～65 ℃。
2.4 天平：感量 0.1 g。
2.5 均质器。
2.6 振荡器。
2.7 无菌吸管：1 mL（具 0.01 mL 刻度）、10 mL（具 0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸头。
2.8 无菌锥形瓶：容量 100 mL、500 mL。
2.9 无菌培养皿：直径 90 mm。
2.10 注射器：0.5 mL。
2.11 pH 计或 pH 比色管或精密 pH 试纸。
3 培养基和试剂
3.1 10 %氯化钠胰酪胨大豆肉汤：见附录 A 中 A.1。
3.2 7.5 %氯化钠肉汤：见附录 A 中 A.2。
3.3 血琼脂平板：见附录 A 中 A.3。
3.4 Baird-Parker 琼脂平板：见附录 A 中 A.4。
3.5 脑心浸出液肉汤(BHI) ：见附录 A 中 A.5。
3.6 兔血浆：见附录 A 中 A.6。
3.7 稀释液：磷酸盐缓冲液：见附录 A 中 A.7。
3.8 营养琼脂小斜面：见附录 A 中 A.8。
3.9 革兰氏染色液：见附录 A 中 A.9。
3.10 无菌生理盐水：见附录 A 中 A.10。
第一法 金黄色葡萄球菌定性检验
4 检验程序
金黄色葡萄球菌定性检验程序见图1。
图1 金黄色葡萄球菌检验程序
5 操作步骤
5.1 样品的处理
称取 25 g 样品至盛有 225 mL 7.5 %氯化钠肉汤或 10 %氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌均质杯内， 8000 r/min～10000 r/min 均质 1 min～2 min，或放入盛有 225 mL 7.5 %氯化钠肉汤或 10 %氯化钠胰酪胨 大豆肉汤的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打 1 min～2 min。若样品为液态，吸取 25 mL 样品至盛有 225 mL 7.5 %氯化钠肉汤或 10 %氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌锥形瓶(瓶内可预置适当数量的无菌玻璃珠 )中，振荡混匀。
5.2 增菌和分离培养
5.2.1 将上述样品匀液于 36 ℃±1 ℃培养 18 h～24 h。金黄色葡萄球菌在 7.5%氯化钠肉汤中呈混浊生 长，污染严重时在 10%氯化钠胰酪胨大豆肉汤内呈混浊生长。
5.2.2 将上述培养物，分别划线接种到 Baird-Parker 平板和血平板，血平板 36 ℃±1 ℃培养 18 h～24 h。 Baird-Parker 平板 36 ℃±1 ℃培养 18 h～24 h 或 45 h～48 h。
5.2.3 金黄色葡萄球菌在 Baird-Parker 平板上，菌落直径为 2 mm～3 mm，颜色呈灰色到黑色，边缘为 淡色，周围为一混浊带，在其外层有一透明圈。用接种针接触菌落有似奶油至树胶样的硬度，偶然会遇 到非脂肪溶解的类似菌落；但无混浊带及透明圈。长期保存的冷冻或干燥食品中所分离的菌落比典型菌 落所产生的黑色较淡些，外观可能粗糙并干燥。在血平板上，形成菌落较大，圆形、光滑凸起、湿润、 金黄色（有时为白色），菌落周围可见完全透明溶血圈。挑取上述菌落进行革兰氏染色镜检及血浆凝固 酶试验。
5.3 鉴定
5.3.1 染色镜检：金黄色葡萄球菌为革兰氏阳性球菌，排列呈葡萄球状，无芽胞，无荚膜，直径约为0.5m～1m。
5.3.2 血浆凝固酶试验：挑取、Baird-Parker 平板或血平板上可疑菌落 1 个或以上，分别接种到 5 mL BHI 和营养琼脂小斜面，36 ℃±1 ℃培养 18 h～24 h。
取新鲜配置兔血浆 0.5 mL，放入小试管中，再加入 BHI 培养物 0.2 mL～0.3 mL，振荡摇匀，置 36 ℃±1 ℃温箱或水浴箱内，每半小时观察一次，观察 6 h，如呈现凝固（即将试管倾斜或倒置时，呈现凝 块）或凝固体积大于原体积的一半，被判定为阳性结果。同时以血浆凝固酶试验阳性和阴性葡萄球菌菌 株的肉汤培养物作为对照。也可用商品化的试剂，按说明书操作，进行血浆凝固酶试验。
结果如可疑，挑取营养琼脂小斜面的菌落到 5 mL BHI，36 ℃±1 ℃培养 18 h～48 h，重复试验。
5.4 葡萄球菌肠毒素的检验
可疑食物中毒样品或产生葡萄球菌肠毒素的金黄色葡萄球菌菌株的鉴定，应按附录B检测葡萄球菌肠毒素。
6 结果与报告
6.1 结果判定：符合 5.2.3、5.3，可判定为金黄色葡萄球菌。
6.2 结果报告：在 25 g（mL）样品中检出或未检出金黄色葡萄球菌。
第二法 金黄色葡萄球菌 Baird-Parker平板计数
7 检验程序
金黄色葡萄球菌平板计数程序见图2。
图 2 金黄色葡萄球菌 Baird-Parker 平板法检验程序
8 操作步骤
8.1 样品的稀释
8.1.1 固体和半固体样品：称取25 g样品置盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内，8000 r/min～10000 r/min均质1 min～2 min，或置盛有225 mL稀释液的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min～2 min，制成1:10的样品匀液。
8.1.2 液体样品：以无菌吸管吸取25 mL样品置盛有225 mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶 内预置适当数量的无菌玻璃珠)中，充分混匀，制成1:10的样品匀液。
8.1.3 用 1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取 1:10 样品匀液 1 mL，沿管壁缓慢注于盛有 9 mL 稀释液的无 菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用 1 支 1 mL 无菌吸管反复吹打使 其混合均匀，制成 1:100 的样品匀液。
8.1.4 按 8.1.3 操作程序，制备 10 倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次，换用 1 次 1 mL 无菌吸管或吸头。
8.2 样品的接种
根据对样品污染状况的估计，选择 2 个～3 个适宜稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），在 进行 10 倍递增稀释时，每个稀释度分别吸取 1 mL 样品匀液以 0.3 mL、0.3 mL、0.4 mL 接种量分别加入三块 Baird-Parker 平板，然后用无菌 L 棒涂布整个平板，注意不要触及平板边缘。使用前，如 Baird-Parker 平板表面有水珠，可放在 25 ℃～50 ℃的培养箱里干燥，直到平板表面的水珠消失。
8.3 培养
8.3.1.1 在通常情况下，涂布后，将平板静置 10 min，如样液不易吸收，可将平板放在培养箱 36 ℃±1 ℃培养 1 h；等样品匀液吸收后翻转平皿，倒置于培养箱，36 ℃±1 ℃培养，45 h～48 h。
8.4 典型菌落计数和确认
8.4.1 金黄色葡萄球菌在 Baird-Parker 平板上，菌落直径为 2 mm～3 mm，颜色呈灰色到黑色，边缘为 淡色，周围为一混浊带，在其外层有一透明圈。用接种针接触菌落有似奶油至树胶样的硬度，偶然会遇 到非脂肪溶解的类似菌落；但无混浊带及透明圈。长期保存的冷冻或干燥食品中所分离的菌落比典型菌 落所产生的黑色较淡些，外观可能粗糙并干燥。
8.4.2 选择有典型的金黄色葡萄球菌菌落的平板，且同一稀释度 3 个平板所有菌落数合计在 20 CFU～ 200 CFU 之间的平板，计数典型菌落数。如果：
a） 如果只有一个稀释度平板的菌落数在20 CFU～200 CFU之间且有典型菌落，计数该稀释度平板上的典型菌落；
b） 最低稀释度平板的菌落数小于 20 CFU 且有典型菌落，计数该稀释度平板上的典型菌落；
c） 某一稀释度平板的菌落数大于 200 CFU 且有典型菌落，但下一稀释度平板上没有典型菌落，应计数该稀释度平板上的典型菌落；
d） 某一稀释度平板的菌落数大于 200 CFU 且有典型菌落，且下一稀释度平板上有典型菌落，但其平板上的菌落数不在 20 CFU～200 CFU 之间，应计数该稀释度平板上的典型菌落；
以上按公式（1）计算。
e） 2 个连续稀释度的平板菌落数均在 20 CFU～200 CFU 之间，按公式（2）计算。
8.4.3 从典型菌落中任选 5 个菌落（小于 5 个全选），分别按 5.3.2 做血浆凝固酶试验。
9 结果计算：
公式（1）：T=AB /CD （1）
式中：
T——样品中金黄色葡萄球菌菌落数；
A——某一稀释度典型菌落的总数；
B——某一稀释度血浆凝固酶阳性的菌落数；
C——某一稀释度用于血浆凝固酶试验的菌落数；
d——稀释因子。
公式（2）： T=(A1B1/C1+A2B2/C2)/1.1d (2)
式中：
T ——样品中金黄色葡萄球菌菌落数；
A1——第一稀释度（低稀释倍数）典型菌落的总数；
A2——第二稀释度（高稀释倍数）典型菌落的总数；
B1——第一稀释度（低稀释倍数）血浆凝固酶阳性的菌落数；
B2——第二稀释度（高稀释倍数）血浆凝固酶阳性的菌落数；
C1——第一稀释度（低稀释倍数）用于血浆凝固酶试验的菌落数；
C2——第二稀释度（高稀释倍数）用于血浆凝固酶试验的菌落数；
1.1——计算系数；
d ——稀释因子（第一稀释度）。
10 结果与报告
根据Baird-Parker平板上金黄色葡萄球菌的典型菌落数，按9中公式计算，报告每g（mL）样品中金黄色葡萄球菌数，以CFU/g(mL)表示；如T值为0，则以小于1乘以最低稀释倍数报告。
第三法 金黄色葡萄球菌MPN计数
11 检验程序
金黄色葡萄球菌MPN计数程序见图3。
图3 金黄色葡萄球菌MPN法检验程序
12 操作步骤
12.1 样品的稀释
按8.1进行。
12.2 接种和培养
12.2.1 根据对样品污染状况的估计，选择 3 个适宜稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），在进 行 10 倍递增稀释时，每个稀释度分别吸取 1 mL 样品匀液接种到 10%氯化钠胰酪胨大豆肉汤管，每个稀 释度接种 3 管，将上述接种物于 36 ℃±1 ℃培养 45 h～48 h。
12.2.2 用接种环从有细菌生长的各管中，移取 1 环，分别接种 Baird-Parker 平板，36 ℃±1 ℃培养 45 h～48 h。
12.3 典型菌落确认
12.3.1 见 8.4.1。
12.3.2 从典型菌落中至少挑取 1 个菌落接种到 BHI 肉汤和营养琼脂斜面，36 ℃±1 ℃培养 18 h～24 h。进行血浆凝固酶试验，见 5.3.2。
13 结果与报告
计算血浆凝固酶试验阳性菌落对应的管数，查 MPN 检索表（见附录 C），报告每 g(mL)样品中金黄色葡萄球菌的最可能数，以 MPN/g（mL）表示。
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